Qualitätsverbesserung durch moderne Abstrichsysteme

Seit wenigen Jahren sind neue Abstrichsysteme für die so genannte liquid based microbiology (LBM) verfügbar.

Gegenüber den früher verwendeten trockenen Abstrichen haben diese eSwab® Abstriche den Vorteil, dass die beim Abstreichen aufgenommenen Erreger gleichmäßig in einer schützenden Nährlösung aufgenommen werden. Dies erlaubt im Labor – anders als bei der Verwendung trockener Tupfer – einen gleichmäßigen Auftrag des Untersuchungsmaterials auf alle verwendeten Nährböden (trockene Abstriche: Verdünnungseffekte: der erste Nährboden wird mit einer großen Menge abgestrichener Erreger versehen, die folgenden Nährböden erhalten immer weniger Erregermaterial).

Darüber hinaus erlaubt die Verwendung von eSwabs® auch die Anzucht und den Nachweis von umweltempfindlichen Erregern mit höherer Ausbeute [1].

PCR-Untersuchungen (Chlamydien, HSV, VZV, CMV, etc. [2]) und kulturelle Anzucht von Erregern (E+R) sind in der Regel aus einem eSwab® möglich. Wir empfehlen daher für mikrobiologische Abstriche ausschließlich die Verwendung der eSwabs®.

Falls Sie nur trockene Abstriche zur Verfügung haben, benötigen wir für jeweils für die PCR-Untersuchungen sowie für die Mikrobiologie jeweils einen Abstrich.

Literatur:
[1] K. G. Van Horn, et al (2008): Comparison of the Copan ESwab system with two amies agar swab transport systems for maintenance of microorganism viability. J. Clin. Microbiol. 46:1655–1658
[2] K.H. Chan et al (2008): Comparison of nasopharyngeal flocked swabs and aspirates for rapid diagnosis of respiratory viruses in children J. Virol.

Copan eSwab®
Standardabstrich für mikrobiologische Un­tersuchungen (Haut- und oberflächliche Ab­striche, Nasen-/ Ra­chenabstriche (E+R), MRSA-Ab­striche, Wundab­striche) KEIN Liquor, Gewebe, Stuhl!

Copan eSwab® Urethra
Urethralabstrich

Abstrichtupfer trocken, Draht
Nasopharyngeale oder Nasen-/Rachenab­striche bei Verdacht auf Influenza, RSV oder andere respira­torische Viren sowie Pertussis. Nicht für mikrobiologische Un­tersuchungen verwenden!

Benutzung von eSwab® beflockten Abstrichen

• Anleitung Rechtshänder(!): entnehmen Sie den beflockten eSwab® Abstrichtupfer aus der sterilen Umverpackung
• öffnen Sie das Probengefäß, wobei Sie optimaler Weise das Probenröhrchen in der linken Hand halten, ggf. den Deckel mit dem kleinen Finger der rechten Hand halten
• streichen Sie nun mit der beflockten Spitze des Tupfers den Bereich ab, von dem der Abstrich genommen werden soll
• stecken Sie den Abstrich vollständig in das Probenröhrchen und brechen ihn an der Sollbruchstelle (der Abstrich springt nicht aus dem Röhrchen!)
• schrauben Sie den Deckel auf den Abstrich
• Patientenetikett bzw. Beschriftung nicht vergessen

Becton-Dickinson (BD) Bactec-Blutkultur­flaschen

• Entnahme im frühen Stadium des Fieberanstieges (Schüttelfrost).
• Keine Materialentnahme aus venösen Zugängen wie Braunülen oder ZVK.
• Nach gründlicher Desinfektion Flaschen mit je 8-10 ml Blut beimpfen, Füllmenge beachten.
• Nach Möglichkeit mind. 2x2 (aerob/anaerob), besser 3x2 BD-Bactec Blutkulturflaschen im Abstand von 30 min mit Blut beimpfen. Bei Kindern: PEDS-Flasche (für ca. 3 ml Blut) verwenden.
• Bei Raumtemperatur lagern (nie Kühlschrank!!!),
• Bei Endocarditis-Verdacht unbedingt mehrfache Materialentnahme (mind. 6) zu verschiedenen Zeitpunkten innerhalb eines Tages.
• Mykobakterien können nicht in diesen Blutkulturen nachgewiesen werden. Hinweis zur Tuberkulosediagnostik bei Verdacht auf Landouzy-Sepsis: 10 mL Citratblut für die kulturelle Anzucht und mindestens 1 mL EDTA Blut für den molekularbiologischen Nachweis (PCR) einsenden.

Aus der Praxis: Die Verwendung von Becton Dickinson (BD) Blutkulturflaschen ermöglicht in Verbindung mit dem neuartigen MALDI-TOF System für die schnelle Erregeridentifizierung einen Direktnachweis von Erregern aus der positiv gemeldeten Blutkultur. Damit liegen relevante Befunde häufig einen Tag schneller vor als mit der traditionellen Mikrobiologie!

Literatur:
Guy PROD’HOM, et al (2010): MALDI-TOF mass spectrometry for direct bacterial identification from positive blood culture pellets. Journal of Clinical Microbiology doi:10.1128/JCM.01780-09

Steriles Plastikgefäß für Liquorproben 

• Entnahme streng aseptisch, erst nach Verdunsten des Desinfektionsmittels
• Sterile Plastikröhrchen verwenden.
• Menge lt. MIQ-Standard:5 ml (incl. TB 10-15 ml)
• Liquor nativ einsenden, für raschen Transport sorgen! Raumtemperatur, Wärmekette nicht unterbrechen!
• klinisch-chemische Untersuchungen: Liquorportion (wegen evtl. Kontamination) sofort kühlen.

Serum vom gleichen Tag für AK-Indices und oligoklonale Banden einsenden!

Li-Heparin-Monovette 

• Entnahme streng aseptisch
• Bei Punktat auf bakterielle Infektion evtl. Teil in Blutkultur-Flasche injizieren (z.B. auch bei Verdacht auf Anaerobier)
• Bei Raumtemperatur lagern

Bei PCR-Untersuchungen können Li-Heparin Monovetten NICHT verwendet werden! Bitte verwenden Sie stattdessen EDTA- oder Citrat-Monovetten.

•  Nativmaterial einsenden
• Atypische Erreger und TB konkret anfordern 

Sputumröhrchen 

(Auch für Trachealsekret und Bronchiallavage verwendbar).
Gewinnung am besten morgens nach Spülung des Mundraums mit Leitungswasser (außer bei Verdacht auf TB) ggf. Ultraschallvernebler mit 3%, steriler Kochsalzlösung zur Provokation einsetzen

Trachealsekret, Bronchiallavage

Aspiration, nativ in sterile Röhrchen, erstes Aspirat verwerfen

Gefäß mit Umverpackung

Optimales Gefäß für intraoperativ gewonnenes Gewebe (z.B. Herzklappen)

Stuhlröhrchen

Empfohlen an 3 aufeinander folgenden Tagen.

Verwenden für:

• Stuhl auf Erreger, Parasiten, Wurmeier
• Calprotectin
• Elastase
• Hämoglobin im Stuhl

IFOBT-Röhrchen

Für Nachweis von Hämoglobin im Stuhl

Tesafilm (auf Objektträger!)

Bei Verdacht auf Madenwürmer (En­tero­bius vermi­cularis, Oxy­uris oxy­ura) Anal­klebe­streifen auf Ob­jektträger ein­senden

Urinröhrchen ohne Stabilisator

Für Eiweiß im Urin
Abgefüllter Sammelurin auf Katecholamine, HIES, Disk-Elektrophorese, Drogenscreening. Kühl lagern und möglichst schnell transportieren!
Für Chlamydia trachomatis- und Gonokokken-PCR

Mit Borat stabilisiertes Nativurinröhrchen

Wenn kein rascher Transport ins Labor möglich für Urinkulturen (verhindert die Vermehrung von Bakterien, ohne sie abzutöten); für PCR-Untersuchungen NICHT geeignet.

Urinbecher

Bei Verdacht auf Urogenital-Tbc: mind. 20 ml Morgenurin (abends zuvor wenig trinken)

24 h-Sammelbehälter (bitte im Labor anfordern)

       +      

Für klinisch-chemische Untersuchungen, bspw. Dopa­min, Katecholamine, Vanillin­mandelsäure, Homovanillinsäure oder 5-Hydroxyindolessig­säure. 

• Optimale Sammelperiode ist morgens bis morgens (z.B. 8:00 bis 8:00 Uhr).
• Sammelzeit beginnt mit der Blasenentleerung (ersten Morgenurin noch verwerfen)
• Urin während des Sammelns kühl und dunkel lagern!
• Für bestimmte Untersuchungen z.B. Katecholamine muss der Urin angesäuert werden: 10 ml 10% HCl in Sammelgefäß vorlegen, siehe Angaben bei den entsprechenden Analyten. (Patient auf die Gefährlichkeit des Zusatzes aufmerksam machen!)
• Aliquot (ca. 10 ml) aus der gut durchmischten Gesamtmenge entnehmen. Die Gesamtsammelmenge unbedingt auf dem Auftragsschein angeben
• Bitte beachten, dass bestimmte Analysen (z.B. Elektrolyte, Protein) nicht aus angesäuertem Urin durchgeführt werden können.

Versandbehälter für Kühltransport

Versandbehälter können im Labor angefordert werden!

PET-Gefäße (500 ml), stabilisiert mit Natrium-Thiosulfat (im Labor erhältlich)

Probengefäß 7/8 befüllen, Probenahme gemäß Probenahme-SOP bzw. gemäß Probenehmerschulung

Versandhinweis

Zecke möglichst intakt und in einem kleinen Gefäß oder kleinem Plastikbeutel einschicken.

Bitte nicht mit Tesafilm auf Zellstoff oder Papier/Pappe fixieren!

Zum Nachweis Zeckenübertragener Infektionserreger, z.B.. Borrelia burgdorferi